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SPRm 200 系列
表面等離子體共振和光學(xué)顯微鏡**結(jié)合
開辟研究細(xì)胞膜蛋白相互作用的新前沿
SPRm200是將表面等離子體共振技術(shù)和光學(xué)顯微鏡巧妙結(jié)合為一體的生物傳感檢測(cè)儀。它為免標(biāo)記研究分子相互作用的領(lǐng)域開辟一個(gè)嶄新的前沿。專門針對(duì)細(xì)胞膜蛋白和相關(guān)分子免標(biāo)記檢測(cè)而設(shè)計(jì)的SPRm200, 使您在不需要從細(xì)胞中提取和分離膜蛋白的前提下實(shí)時(shí)觀察細(xì)胞結(jié)構(gòu)并同時(shí)測(cè)量藥物和靶點(diǎn)在細(xì)胞上的結(jié)合過(guò)程。還可進(jìn)行對(duì)藥物和在天然狀態(tài)下的膜蛋白之間相互作用的測(cè)量。由于出色的靈敏度和穩(wěn)定性,SPRm200能夠測(cè)量納米尺度上的結(jié)合行為,可用于研究細(xì)菌或病毒與抗菌性藥物的相互作用,以及發(fā)展新型藥物載遞納米顆粒。
活細(xì)胞上免標(biāo)記生物分子結(jié)合過(guò)程的檢測(cè)
實(shí)時(shí)親合力及動(dòng)力學(xué)定量測(cè)量像圖
光學(xué)和表面等離子體共振同時(shí)成像
藥物分子對(duì)多細(xì)胞或單細(xì)胞作用的檢測(cè)
納米尺度上分子結(jié)合過(guò)程的跟蹤檢測(cè)
Binding activities of Nano,materials (2um size)
光學(xué)顯微鏡與SPR技術(shù)的集成
SPRm200把SPR技術(shù)和光學(xué)成像結(jié)合起來(lái),能夠?qū)罴?xì)胞成像并將藥物分子結(jié)合反應(yīng)定位分布圖像實(shí)時(shí)地表征出來(lái)。如圖1所示,明場(chǎng)聚焦光源照射于芯片表面固定的細(xì)胞,而底部的照相機(jī)實(shí)時(shí)捕獲活細(xì)胞的圖像。同時(shí)SPR光源沿共振角度投射于傳感器芯片上,由SPRm200檢測(cè)器測(cè)定反射光,并把每一個(gè)像素點(diǎn)上的SPR響應(yīng)信號(hào)記錄下來(lái)組建成SPR傳感圖。
傳統(tǒng)的SPR技術(shù)只能在大的整體傳感區(qū)域內(nèi)(通常稱之為通道)測(cè)量平均共振角度的變化,而SPRm200檢測(cè)器能夠測(cè)量微小局部中的任何像素上的共振角度變化并且記錄每一個(gè)像素上的傳感曲線圖。圖2顯示了SPRm200同時(shí)記錄的明場(chǎng)和SPR圖像以及圖中任何一點(diǎn)或區(qū)域的傳感曲線圖。因此SPRM能提供更多的局部信息,并且可以在研究天然態(tài)下的膜蛋白的非均相表面結(jié)合過(guò)程以及它們和藥物之間的相互作用。
對(duì)神經(jīng)瘤細(xì)胞與WGA結(jié)合的實(shí)時(shí)檢測(cè):明視場(chǎng)與SPR的同步圖像,右邊是選擇點(diǎn)的SPR傳
感圖。
凝集素- 糖蛋白相互作用
研究細(xì)胞上的信號(hào)通道和藥物篩選通常首先研究配體與膜蛋白的結(jié)合,而研究在天然狀態(tài)下膜蛋白對(duì)于理解其生物功能至關(guān)重要。這里是研究糖蛋白(膜蛋白)和凝集素(配體)之間的特異性相互作用以及單個(gè)細(xì)胞膜上受體的結(jié)合活性和空間分布的一個(gè)實(shí)例。
將神經(jīng)瘤細(xì)胞SHEP1在芯片上培養(yǎng)或固定,然后置于SPRM樣品臺(tái)上。將PBS緩沖液在25度以300 μl/min的流速注入細(xì)胞池獲得基線。當(dāng)80μg/ml的小麥胚芽凝集素(WGA)被注入細(xì)胞室,儀器可以實(shí)時(shí)檢測(cè)到傳感曲線的結(jié)合段;而當(dāng)PBS緩沖液沖洗時(shí),儀器也可測(cè)量到解離段。每進(jìn)行下一個(gè)濃度實(shí)驗(yàn)前,用50 mM GlcNAc 溶液來(lái)再生細(xì)胞表面上的膜糖蛋白受體。用不同的WGA濃度(5, 10, 40, 80,100, 200 μg/ml)重復(fù)對(duì)細(xì)胞的進(jìn)行類似測(cè)量,則可以得到如圖2右所示的一系列傳感曲線圖。將每個(gè)像素的數(shù)據(jù)予以平均后,可以使用一級(jí)結(jié)合動(dòng)力學(xué)模型(參見(jiàn)下文)推導(dǎo)出細(xì)胞不同部位上的結(jié)合動(dòng)力學(xué)參數(shù)。我們儀器測(cè)量結(jié)果與以前發(fā)表的數(shù)據(jù)十分吻合:
nACHRs 的結(jié)合行為的定位
nAChR膜受體在神經(jīng)傳遞和尼古丁成癮中起著關(guān)鍵作用,通常測(cè)定受體在細(xì)胞中的分布使用熒光標(biāo)記的二抗。由于熒光檢測(cè)不能提供直接的動(dòng)力學(xué)數(shù)據(jù)而容易導(dǎo)致假陽(yáng)性的結(jié)論,SPRm200因?yàn)橹苯訙y(cè)量一抗與不含二抗的nAChR的結(jié)合,該過(guò)程不僅更加簡(jiǎn)單,且克服了被標(biāo)記的二抗所引起的不確定因素。
上圖中,工程化SH-EP1細(xì)胞在膜上表達(dá)α4β2 受體,并結(jié)合初代抗體抗α4(右圖)。通過(guò)SPR 像圖所顯示的nAChR 同其初代抗體結(jié)合的分布(粉紅色),可以明顯看出這是一個(gè)非均相的表面結(jié)合。用SH-EP1野生型細(xì)胞來(lái)作為對(duì)照, 傳感曲線右下圖A顯示了兩種類型的細(xì)胞對(duì)nAChR的反應(yīng)具有顯著差異。如傳感圖B中所示,從SH-EP1工程化細(xì)胞反應(yīng)減去野生型細(xì)胞反應(yīng)(主要出于體積折射率效應(yīng))可以得到nAChR與其**抗體的結(jié)合動(dòng)力學(xué),它們分別為kon = 6×104/Ms,koff = 3×10-3/s 和
KD=45nM。
納米顆粒檢測(cè)
在納米尺度上,由一個(gè)納米顆粒所產(chǎn)生的SPR響應(yīng)信號(hào)非常獨(dú)特。就好像把一個(gè)小石子放在一個(gè)緩緩流動(dòng)的淺溪中,水面上就會(huì)產(chǎn)生一個(gè)波紋圖案(參考下圖)。SPR光源按共振角度投射到傳感器芯片上使其產(chǎn)生一個(gè)沿著金屬膜表面?zhèn)鞑サ谋砻娴入x子體(SP)波,如圖3所示。當(dāng)一個(gè)納米顆粒結(jié)合到芯片表面時(shí),它便成為SP波的發(fā)散點(diǎn),因而會(huì)在SPR像中產(chǎn)生波紋圖案。其形狀遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于納米顆粒的實(shí)際尺寸(100 倍以上)。這放大的波紋圖案使得SPRm200能夠檢測(cè)到粒子尺度遠(yuǎn)小于其光學(xué)衍射的極限,通過(guò)對(duì)這個(gè)放大的波紋圖案進(jìn)行跟蹤和測(cè)量,就能實(shí)現(xiàn)對(duì)分子在納米尺度下結(jié)合行為的研究。
細(xì)菌和抗生素
大腸桿菌O157:H7 在LB肉湯培養(yǎng)基中通過(guò)抗體偶聯(lián)被交聯(lián)在傳感器芯片上。他們因發(fā)散芯片中的SP波而在SPR像上產(chǎn)生許多點(diǎn)波紋如下圖右邊所示。
參考文獻(xiàn):
K Syal, R Iriya, Y Yang, H Yu, S Wang, S Haydel, HY Chen, NJ Tao, "Antimicrobial Susceptibility Test with Plasmonic Imaging and Tracking of Single Bacterial
Motions on Nanometer Scale", ACS Nano, 10, 845-852, 2016
F Zhang, S Wang, L Yin, Y Yang, Y Guan, W Wang, H Xu, NJ Tao, “Quantification of Epidermal Growth Factor Receptor Expression Level and Binding Kinetics
on Cell Surfaces by Surface Plasmon Resonance Imaging", Analytical Chemistry, 87(19), 9960-9965, 2015
W Wang, L Yin, L G-M, S Wang, X Yu, S Eaton, S Zhang, H Chen, J LaBaer, NJ Tao, “In situ drug-receptor binding kinetics in single cells: a quantitative labelfree
study of anti-tumor drug resistance”, Scientific reports, 4, 1-7, 2014
W Wang, Y Yang, S Wang, V Nagaraj, Q Liu, J Wu and NJ Tao, "Label-free measuring and mapping of binding kinetics of membrane proteins in single living
cells", Nature Chemistry, 4, 846-853, 2012
Wang, Shaopeng, et al. "Label-free imaging, detection, and mass measurement of single viruses by surface plasmon resonance." Proceedings of the
National Academy of Sciences 107.37 (2010): 16028-16032.
參數(shù)表:
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